试剂盒操作注意事项：使用前，先检查机器所有紧固件是否拧紧，皮带是否张紧。 主轴运转方向必须符合防护罩上所示箭头方向，否则将损坏机器，并可能造成人身伤害。 检查电器是否完整。检查机器粉碎室内有无金属等硬性杂物，否则会打坏，影响机器运转。物料在粉碎前一定要检查纯度，不允许有金属硬杂物混入，以免打坏引起燃烧等事故。机器上的油杯应经常注入润滑油，保证机器正常运转。停机前停止加料，如不继续使用，要清理机内物。定期检查同筛网是否损坏，如有损坏，应立即更换。 检测试剂盒的特异性与检测试剂盒的要害组分，抗体对有关。溶出介质(EP,pH8.0)
注意事项：1.全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得较佳的实验结果，较好在取样 2h内进行实验，样品存放时间越长，细胞分离效果越差。样品放置超过 6h后分离效果更差甚至不能达到分离目的。2.本实验较好不要使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离 心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面 会变成毛面，影响细胞分离效果。3.吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒 细胞数量增加。4.分离液用量大于组织单细胞悬液样本时，分离效果更佳。植物电穿孔缓冲液注意事项：避免反复冻融。
具体的检测试剂盒规矩说明操作方法：要确保微量加样器的准确性，能够运用蒸馏水和电子天平进行确认(因为蒸馏水不含杂质，温度环境为20%左右时，lmL的水能够看作是lg、200L的水能够看作是0.2g)每一把微量加样器都应该将其高量程和低量程进行确认。在运用微量加样器时，汲取不同瓶子中液体后要更换头，即便汲取规范品溶液。汲取液体时速度不易太快，以免发生气泡，汲取的量不够准确。将液体加到酶标孔中时，避免头和孔内液体触摸，可使头上的液滴和孑L壁触摸，液滴会自然流下去。吸入液体时的的方法是吸两档打一档，避免因为头的毛细作用使得部分液体不能流出而形成的差错。
检测试剂盒样品收集: 细胞培养上清：取细胞培养上清于1000×g离心20分钟，除去杂质及细胞碎片。取上清检测。其它生物样品：1000×g离心20分钟，取上清即可检测。样品应清澈透明，悬浮物应离心去除。样品收集后若在1周内进行检测的可保存于4℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃(1个月内检测)，或-80℃（6个月内检测），避免反复冻融。如果您的样品中检测物浓度高于标准品高值，请根据实际情况，做适当倍数稀释（建议先做预实验，以确定稀释倍数）。检测试剂盒扫除各种影响因素的干扰和正确操作是保证检测成果准确牢靠的必要条件。
BMC原代分离步骤：1) 抽取人的外周血于肝素抗凝管中，取足5mL新鲜血液，加入PBS按1：1稀释血液（一般**管2mL+2mL）。2) 取淋巴细胞分离液5mL于15mL灭菌离心管中待用。3) 吸取稀释血液，在离分层液上方1cm处，沿试管壁徐徐加入，使稀释血液重叠于分层液上，并与分离液形成明显界面。4) 室温，离心2000rpm，20min。此时离心管中形成5层：较上面是血浆，血浆层和淋巴细胞分离液之间是淋巴细胞层呈白膜状。5) 小心吸取中间呈白膜状的单个核细胞层，尽量全部吸出单个核细胞。加5倍以上体积的PBS洗2次，每次离心1500rpm，10min。如需少量液体试剂则可用滴管取用，取用时应注意不要将滴管碰到或插入接收容器的壁上或里面。巴氏染色液(Papanicolaou EA36)
BMC原代分离步骤：较上面是血浆，血浆层和淋巴细胞分离液之间是淋巴细胞层呈白膜状。溶出介质(EP,pH8.0)
DC细胞诱导：1) 将收集的PBMC在1640培养基，在37 ℃、5 % CO2条件下在培养板培养4h。2) 轻轻吸取上清，收集贴壁细胞，加入含15%血清，100ng/ml rhGM-CSF、100ng/ml rhIL-4的1640培养基，培养5～7d获得未成熟DC，用25ng/ml hTNF-α刺激2～3天，获得成熟DC。3) 用倒置显微镜观察细胞形态，至细胞毛刺样突起，有典型DC形态悬浮细胞。注意事项：细胞较好在细胞贴壁注：分离后细胞较好在贴壁后当天换液（贴壁细胞贴壁能力很弱，润洗时轻柔），过夜后部分细胞漂浮，细胞得率减少。溶出介质(EP,pH8.0)
