DAPI是一种能够与DNA强力结合的荧光染料,常用荧光显微镜观测,可以透过完整的细胞膜,可用于活细胞和固定细胞的染色,其工作浓度一般为0.3mmol/L或0.1ug/ml。显微镜下可以看到蓝色荧光的细胞,荧光显微镜观察细胞标记的效率高 ,且对活细胞无毒副作用。DAPI染色常用于细胞凋亡检测,染色后用荧光显微镜观察或流式细胞仪检测。DAPI也常用于普通的细胞核染色以及某些特定情况下的双链DNA染色。DAPI的大激发波长为340nm,大发射波长为488nm, DAPI和双链DNA结合后,大激发波长为360nm,大发射波长为460nm。PH电极的保护液，即 3mol/L的KCL溶液。地衣红染色液(1%)
单个核细胞分离液：反复着床失败(recurrent implantation failure, RIF)已成为阻碍妊娠率进一步提高的瓶颈问题。PBMCs (peripheral blood mononuclear cells)是指外周血单个核细胞包括T淋巴细胞、B淋巴细胞和单核细胞等,研究发现皮下注射丈夫或第三者外周血淋巴细胞主动免疫治好能提高IVF-ET反复着床失败患者的妊娠率和活产率。在着床前宫腔灌注自体单个核细胞（PBMCs）（部分文献写为单核细胞）联合HCG用于反复着床障碍的患者其具有操作简单、一次完成、安全简便、无反应等优点。对于反复着床失败患者在胚胎移植前给予宫腔灌注HCG处理过的PBMCs免疫治好能明显提高患者的胚胎着床率和妊娠率。茜素黄-百里酚酞指示剂用pH计测定配制好的盐溶液的pH值，使其在6.4~7.0之间。
校准液标示值往往是按其基质偏差修正的，所以标示值并非实际值。校准液、质控血清通常是经过处理的混合人或动物血清，这种制备物在特定分析系统中往往与人新鲜血清反应性不同而产生基质偏差。如总胆固醇测定基质效应研究指出：校准液酶法测定回收结果偏低可达5%~7%。甘油三酯测定，有人主张选用双试剂方法消除内源性甘油，这个方法是可行的，但忽视了一个化学平衡理论。因为所有的酯在水溶液中都不是简单地以酯的形式存在，而是以水解与酯化相平衡的形式存在。在一个平衡体系中，如果去除游离甘油，这个平衡就向生成甘油方向移动，甘油三酯就会重新水解，生成新的甘油，达到新的平衡，因此样品与R1试剂孵育时间越长，测得甘油三酯值就越低。甘油三酯测定，不只要去除游离甘油，而且还要克服样本含量真实性发生的变化，试剂中必须加入甘油激酶，并且延迟时间要标准化。所以，一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。
检测试剂盒样品收集: 细胞培养上清：取细胞培养上清于1000×g离心20分钟，除去杂质及细胞碎片。取上清检测。其它生物样品：1000×g离心20分钟，取上清即可检测。样品应清澈透明，悬浮物应离心去除。样品收集后若在1周内进行检测的可保存于4℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃(1个月内检测)，或-80℃（6个月内检测），避免反复冻融。如果您的样品中检测物浓度高于标准品高值，请根据实际情况，做适当倍数稀释（建议先做预实验，以确定稀释倍数）。杀灭曲线的建立：第2天换用新鲜配制的含有相应浓度药物的培养基。
检测试剂盒的实验步骤有哪些呢？检测试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可使用，酶标包被板开封后如未用完，板条应装入密封袋中保存。浓洗涤液可能会有结晶析出，稀释时可在水浴中加温助溶，洗涤时不影响结果。各步加样均应使用加样器，并经常校对其准确性，以避免试验误差。一次加样时间控制在5分钟内，如标本数量多，推荐使用排加样。请每次测定的同时做标准曲线，做复孔。如标本中待测物质含量过高（样本OD值大于标准品孔孔的OD值），请先用样品稀释液稀释一定倍数（n倍）后再测定，计算时请*后乘以总稀释倍数（×n×5）。外用液体试剂系指药物与适宜的溶剂或分散介质制成的。硫酸鱼精蛋白溶液(0.1%)
检测试剂盒准确度是测定值与实在值挨近的程度。地衣红染色液(1%)
怎样减少检测试剂盒误差？严控反应时间，反应时间过长，酶失活；反应时间过短，酶结合物不能与血清中的微生物抗原抗体充分结合，生成物结构松散不牢固，容易洗掉，都可能造成假阴性。注意检测试剂盒保存期，过保存期的试剂不能使用。评估试剂的实用性，试剂的稳定与否，对准确率的高低到头重要。在试剂启用前，应进行阴、阳对照及样品反复比照试验，判定试剂符合要求后方可使用。严格掌握显色时间，显色时间过短，加入终止液反应终止后，底物结合物的量过少，易出现假阴性。超过显色要求时间后显色，应判为假阳性，这可能与试剂本身有关。加显色剂后立即显色，不可报阳性，这可能是本底显色的结果。地衣红染色液(1%)
