芯弃疾JX-8B数字ELISA产品
每个生物实验室都用得起的单分子免疫检测
珠子以两种不同的方式读出。首先，在与100μMresorufin-阝-D孵育1小时后，用荧光板读出器以100μL方式读出珠子结合-半乳糖苷（RGP），一种荧光底物for阝-半乳糖苷酶。在平板阅读器上，检测限为15fMofS阝G（图2）。其次，将珠子加载然后将RGP溶液密封到阵列的孔中，单个酶的信号被允许在反应室中积累，并每30秒获取一次荧光图像。实验结束时获取阵列的白光图像以识别含有珠子的孔（含有珠子的孔散射光与空井不同）。荧光图像用于确定哪些微球具有相关的结合酶（从时间变化的荧光图像中强度增加）。图2显示了微球中含酶的比例与总体S阝G浓度的关系的对数-对数图。检测到的比较低酶偶联物浓度为350飞摩尔（zM），并通过外推信号等于的酶浓度计算得出的检测限（LOD）。 芯弃疾JX-8B简易版单分子ELISA检测产品，超敏检测，常规试剂可轻松达到0.2pg！进口数字ELISA极速
创新性的解决方案：芯弃疾JX-8B数字ELISA
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我们继续在两个关键领域改进SiMoA技术。首先，在两个关键领域可能再增加两个灵敏度等级基于对酶标记的敏感性（图2）可以检测蛋白质，如果非特异性相互作用可以更小化背景信号。单个珠子上分离和询问单个分子的能力为区分抗体-抗原结合事件和非特异性结合复合物。其次，我们简化了检测的物流。然而，即使在目前的形式下，我们相信数字ELISA有可能促进疾病的早期诊断和治理。 进口数字ELISA极速芯弃疾JX-8B数字ELISA，超敏检测，低可测试到亚皮克级；
创新性的解决方案：芯弃疾JX-8B数字ELISA应用范围：各种高灵敏多重免疫检测，可替代各种ELISA试剂盒，及其他免疫检测产品。循环血液转化为~2×10−15M（或2飞摩尔，fM)；早期HIV传染血清中每mL含有10-3000个病毒颗粒，相当于p24抗原浓度范围为从50×10−18M（50attomolar，aM)到15×10−15M（15fM）10.尝试开发能够测量这些蛋白质浓度的方法集中在蛋白质上的核酸标记复制，11,12或测量整体、结合标记蛋白分子的性质13-16。Mirkin等人12,17及其他研究者18使用基于金纳米颗粒和DNA生物条形码的标记物，已将蛋白质的检测范围扩展至低飞摩尔水平；更近使用该技术的一篇报道展示了检测到10飞摩尔PSA插入物17。这些方法所达到的灵敏度然而，检测蛋白质仍然落后于核酸，如聚合酶链反应（PCR），从而限制了蛋白质组中具有已在血液中检测到6,19。单个蛋白质分子的分离和检测为测量极低浓度的蛋白质s1,2提供了一种有希望的方法。
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根据目标蛋白的抗体制备了功能化的微球生产商说明。含有目标蛋白的100-μL测试溶液与200,000个磁珠悬浮液孵育2小时至23°C。然后将磁珠分离并用PBS和0.1%Tween-20洗涤三次。磁珠重新悬浮后与含有检测抗体（通常约为1nM)的溶液孵育45分钟。在23°C下最小值。然后将珠子分别用PBS和0.1%洗涤三次。Tween-20。将珠子与含有SβG（1–50pM)的溶液在23°C孵育30分钟，然后分离并在PBSand0.1%Tween-20中洗涤六次。随后将珠子重悬于10μLofPBS中，并加载到飞升液位阵列中。整个实验的总时间约为~6小时。 芯弃疾JX-8B单分子小型化ELISA检测产品，多重检测，同时测试2-6个检测项目；
芯弃疾JX-8B数字ELISA高敏检测产品；具有以下特点：多重、超敏微量、极速灵活、开放;
只有少量分泌蛋白可测量的可能性突显了蛋白质测量领域面临的挑战：医学上相关的生物标志物可能存在于非常低的丰度中。免疫测定仍然是是蛋白质生物标志物敏感和特异性测量的基础。然而，传统的免疫分析技术在检测不可测量的生物标志物时灵敏度不足，这些生物标志物肯定位于当前可检测范围之下。主流的传统免疫分析方法——包括酶联免疫吸附试验（ELISA）、化学发光和电化学发光——的灵敏度下限约为10^-13M（~<0.1pM)。许多降低灵敏度的方法已被描述，包括拉曼增强信号检测、电感耦合等离子体质谱，但这些方法的数据表明其成功有限。非常规方法如亚飞摩尔级检测具有明显的权衡，例如程序较长或无法提供定量答案。
新型的单分子检测方法的普及版；科研数字ELISA准确宽
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生物实验室、医学实验室常见问题：ELISA使用繁琐、用时长、样本用量大、使用不够灵活。使用方法比较繁多，用时长，每次检测可能要花几个小时，经常半天就测试了一轮工艺；如果要根据结果来改善，就得再花上半天、一天；使用和实验安排不够灵活。ELISA试剂盒每次购买和使用，大多都要以整版方式进行，不够灵活。 进口数字ELISA极速
