外泌体载带蛋白质药物的方法包括直接和间接两种载yao方式。间接载yao方式是目前实现外泌体载带目标蛋白质的主要方法，通过基因工程使目标蛋白质核酸转染供体细胞，待供体细胞表达目标蛋白质后，分离纯化其培养基，得到载带有目标蛋白质的外泌体递送系统。主要缺点是载药周期长、载药量和载药过程不可控，在一定程度上限制该方法在构建外泌体递送系统上的应用；直接载yao方式是指不涉及外泌体供体细胞，直接通过某种化学或物理作用将外源性蛋白质载入外泌体中的方法。因周期短、操作简单、过程可控等优点，成为一种极句前景的研究方法。利用成纤维细胞样干细胞来源的外泌体装载靶向KRAS的siRNA，可以抑制胰腺ai的生长。浙江动物细胞样本外泌体载药实验服务
外泌体载药系统的性质评估：1对外泌体进行一般性质评估的方法已有多种，包括纳米颗粒跟踪分析技术(NTA)、动态光散射(DLS)、流式细胞术、原子力显微技术(AFM)、透射电子显微镜(TEM)、扫描电子显微镜(SEM)等。2细胞实验：将载药外泌体添加到相应的细胞培养基，通过培养观察、检测表达物或统计细胞凋亡率来验证载药外泌体与靶细胞的亲和力、药理作用并分析其作用机制。3动物实验：不jin可验证载药外泌体的体内药理作用，还可研究其全部或部分药动学参数。与细胞实验比较，动物实验考虑内环境、体温、免疫qing除等各种因素对载药外泌体的影响，同时还考虑个体差异的影响，从而得出更句临床意义的结论。样本外泌体载药与游离的紫杉醇相比，负载紫杉醇的外泌体可明显抑制中流细胞的增殖和转移。
与人工合成囊泡相比，外泌体虽然具有一定的靶向性，但由于其高度的复杂性和成分的多样性，作为载药体的应用仍缺乏普遍靶向性，可能产生脱靶效应，诱发不良反应;而且可溶性低，循环半衰期短，因此针对外泌体表面标志物的改造以获得靶向性一直是研究热点;此外，也有大量研究针对内容物进行改造，近年来主要以外源性的抗中流药物、核酸分子、转录因子和酶类，内源性母乳多糖、低聚糖、多肽等为“货物”，将它们载入外泌体后运送到标靶位置。对母乳外泌体进行载药改造，既保留了外泌体本身的特性，同时充分利用了功能性内外源物质，又可进一步优化外泌体的靶向性与稳定性，有望为zhiliao新生儿相关疾病提供新的思路和方法。
影响外泌体载药效率的因素有许多：1外泌体的分离与纯化：目前，准确和标准的外泌体纯化方法较少，使用不同方法获得的外泌体其收率与纯度差别较大，需要根据研究目的不同选择适当的分离方法，超速离心法是外泌体纯化常用的手段，低速离心和高速离心交替进行的方法通常用于从大量样品中分离外泌体，但获得的外泌体纯度不高。外泌体的收率过低与低纯度会影响其对药物包载效率，难以实现大批量生产。2包载方法：根据包载药物的分子极性、相对分子质量及自身所带电荷等性质选择不同的包载方法。不同包载方法对于同一种药物的包载效率可能完全不同。装载miＲ-17-92团簇的间充质干细胞外泌体处理中风大鼠，其神经学功能得到改善。
外泌体的提取方法在外泌体载药系统中应用——超高速离心法。其中超高速离心法是常用的,该方法是被誉为分离外泌体的“金标准”。因操作简单,不需要复杂的技术支持,并且成本相对较低而被广fan使用。但是该方法耗时、产率低,得到的外泌体的数量和质量很大程度上受转子的类型、转子沉降角度等因素影响,其中主要的问题就是差速离心法获得的沉淀物是外泌体,但也会有其他的囊泡、蛋白质或蛋白和RNA的聚集体。所以得到的外泌体的纯度和产量都不高。外泌体对基因类药物的装载方式一般采用电穿孔法和化学转染法。浙江动物细胞样本外泌体载药实验服务
树突细胞分泌的外泌体表面会表达出CD9，有利于加强外泌体与靶细胞的融合，提高外泌体对药物运输的效率。浙江动物细胞样本外泌体载药实验服务
外泌体的提取方法在外泌体载药系统中应用——聚合物沉淀法。用于分离病毒和其他的生物大分子，已有50多年历史,近几年,将其作为一种新的方法来分离外泌体。目前,市场已经有应用聚乙二醇(polyeth yleneglycol,PEG)溶液提取外泌体的试剂盒,常见的是SystemBiosciences公司的ExoQuick®和ExoQuick-TC®kits,该试剂盒操作简单不需要特殊的仪器,但是价格昂贵。提取外泌体的试剂盒主要成分是PEG8000(30%~50%),将试剂盒与体液或细胞培养液4℃孵育过夜,之后再低速离心。即可进行外泌体的提取，此方法实行起来较为简单。浙江动物细胞样本外泌体载药实验服务
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