通过三质粒瞬转体系生产病毒载体，会引入宿主细胞DNA残留（HCD）、蛋白残留（HCP）、工艺杂质（如antibiotics、核酸酶等外源物质）等污染，存在潜在的致瘤性和免疫原性等风险。药品监管机构一般允许生物制品中存在10ng/dose以下的残留DNA。此外，根据杂质来源、工艺以及产品类型不同，也会对HCD限度做不同要求。为了达到这个要求，一般通过核酸酶处理和色谱联用的方法。一般在细胞培养液裂解/收获、澄清收获及超滤浓缩等环节加入核酸酶处理，需要工艺摸索来确认处理方式。生理盐浓度下，M-SAN HQ中盐核酸酶性能优于常用核酸酶。江西ArcticZymes中盐核酸酶70950
在传统生物技术行业（如抗体、疫苗领域）使用的下游纯化工艺步骤，已经用于慢病毒的大规模下游处理。主要是基于膜(过滤/澄清，利用切向流过滤TFF进行浓缩/渗滤，基于膜的色谱)和色谱(离子交换色谱IEC，亲和色谱AC，体积排阻色谱SEC)的技术。这些不同的过程步骤的组合是可变的，在某些情况下，不同的纯化方法可以用于相同的目的。此外，采用benzonase/M-SAN HQ中盐核酸酶降解污染的DNA或者用于下游的一个步骤，或者用于病毒生产阶段。河北ArcticZymes中盐核酸酶70950ArcticZymes的产品开发、生产、销售和营销过程均通过ISO13485质量标准的认证。
文章作者按照经典的慢病毒载体生产流程操作，在融化、核酸酶消化、澄清、超滤等步骤留样，分别检测dsDNA浓度及功能性LV病毒滴度。经过分析发现，——去除主要发生在澄清环节，能去除dsDNA的80%-90%；2. M-SAN HQ中盐核酸酶比Benzonase能更高效去除dsDNA，即M-SAN HQ组的TFF回流液中dsDNA残留量是Benzonase组回流液的20%左右；3. LV病毒滴度在澄清环节损失30%-40%；4. M-SAN HQ组的TFF回流液中LV病毒滴度略高于Benzonase组的回流液数据。
ArcticZymes Technologies于2019年推出了M-SAN HQ中盐核酸酶，2021年推出对应的M-SAN HQ ELISA kit。该试剂盒原理是采用双抗夹心法定量检测各种生物制品的中间品、半成品和成品中M-SAN HQ中盐核酸酶的残留含量，特异性的anti-M-SAN作为捕获抗体偶联在孔板上，辣根过氧化酶HRP标记anti-M-SAN作为检测抗体，TMB是检测反应底物。该试剂盒特异识别M-SAN HQ中盐核酸酶，对其它核酸酶没有特异性结合。它的定量范围是0.12-7.5ng/ml；12*8strips的设计规格，使用灵活，更能降低使用成本。ArcticZymes成立于20世纪80年代后期，总部位于挪威北部的特罗姆瑟。
宿主细胞DNA残留的担忧是基于致ai风险理论，特别是生产细胞系所包含的致ai序列，比如较常见腺病毒基因E1A和E1B（HEK293, PerC.6 和CAP 细胞系），人乳tou瘤病毒E6和E7基因（HeLa细胞系)等。当使用致ai细胞系生产AAV时，下游纯化须尽可能减少残留DNA。工业上一般使用核酸酶分解残留DNA，普遍认为小于200 bp的DNA片段可有效降低致ai风险。宿主细胞蛋白残留与免疫原性、炎症或过敏性休克有关。尽管与非人类的生产原料相比（非人类细胞系如BHK21或昆虫细胞，以及辅助病毒如HSV、腺病毒、杆状病毒），人类细胞免疫原性比较弱。M-SAN HQ中盐核酸酶终产品经过0.22µm过滤；江西ArcticZymes中盐核酸酶70950
M-SAN HQ中盐核酸酶生产符合ISO 13485:2016规范，提供相关文件用于申报。江西ArcticZymes中盐核酸酶70950
慢病毒大规模纯化的捕获步骤包括：膜过滤澄清，随后切向流过滤/超滤或者体积排阻色谱浓缩。此外，需用核酸酶（benzonase或M-SAN HQ中盐核酸酶）来去除细胞残留的、质粒来源的DNA污染。这两个步骤顺序可以调整，依据项目工艺而定。两种工艺路线各有优缺点：先用核酸酶消化的优点是可去除大的DNA片段，且后续步骤可以去除残留核酸酶；但所用的核酸酶的量也非常大。与此相反，将核酸酶步骤后置的优点是大幅降低核酸酶的量(成本降低)；但后面的步骤必须有将核酸酶去除的能力。此外，后期用核酸酶的缺点是核酸污染可能会结合慢病毒颗粒形成沉淀，进而导致慢病毒在纯化中流失，从而影响得率。江西ArcticZymes中盐核酸酶70950
M-SAN HQ中盐核酸酶发挥酶活性的条件比较广。例如，该酶适宜的盐浓度（NaCl）范围是0mM-2...
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