静安区裸鼠疾病动物模型建模

是从侧面展示的压迫元件插入椎间孔的结构示意图。图3是术后大鼠四肢表现情况。图4是术后28天大鼠的双下肢缩足阈值变化曲线图。图5是重复经颅磁刺激对大鼠背根神经压迫模型的影响。具体实施方式以下通过具体的实施例对本发明的技术方案做进一步的描述。以下的实施例是对本发明的进一步说明，而不是限制本发明的范围。实施例1、模型的制备1、腹腔注射1％戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g)，背部剃毛，碘伏消毒背部皮肤，俯卧位固定于动物手术台上，铺无菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左侧作一2-3cm纵行切口，切开皮肤，钝性分离椎旁肌至横突上方，暴露腰4椎间孔，腰5椎间孔(椎旁肌可用自制拉钩保持分离状态)。3、将2根***端11为4mm，第二端12为2mm，直径为，第二端12置于腰4椎间孔及腰5椎间孔外。如图1和2所示，可以看到腰4锥体1、腰5锥体2、腰6锥体3、l型棒10、腰4神经根4和腰5神经根5的位置关系。当l型棒10的***端11插入腰4锥体1的腰4椎间孔后，会对腰4神经根4起到压迫作用；同样的，当l型棒10的***端11插入腰5锥体2的腰5椎间孔后，会对腰5神经根5起到压迫作用。从而达到模拟腰椎间盘突出压迫神经根的目的，制备得到大鼠慢性背根神经压迫模型早期阶段科学假说与疾病潜在药物治疗效果评价始于小鼠疾病模型构建及其实验室研究。静安区裸鼠疾病动物模型建模

pcrmix：反应条件：pcr扩增产物的电泳鉴定结果如图3所示，从图3中可以看出，6、8、9号为pirb基因敲入小鼠在、，wt小鼠pcr产物没有这两个扩增产物。(c)短链pcr反应，引物如下：primers(℃):forwardprimer(f4):5’-aacaatcaggctgccgaatctg-3’reverseprimer(r4):5’-ctttattagccagaagtcagatgc-3’expectedpcrproduct:targetedallele:344bppirb基因敲入型小鼠能够扩增出344bp的产物，而野生型没有。pcr体系：反应条件：(2)f1代小鼠测序：通过pcr扩增后测序鉴定小鼠基因型，如图4所示，为6号pirb基因敲入小鼠测序峰图，pcr所用引物如下：sequencingprimerforpcrproduct1：5’sequenceprimer(f3):5’-cacttgctctcccaaagtcgctc-3’sequencingprimerforpcrproduct2:3’sequenceprimer(r3):5’-atactccgaggcggatcacaa-3’(3)southern杂交检测f1代小鼠基因型：采用bamhi和avrii核酸内切酶切割dna分子，切割示意图如图5。具体的southern杂交检测过程如下：步骤a、提取f1代小鼠尾部dna；步骤b、制备探针，通过pcr方法将dig-dutp渗入到步骤a的dna分子中。无锡生殖疾病动物模型建模查阅已有的相关小鼠模型综述文献。

人类疾病的动物模型是指各种医学科学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的动物，动物疾病模型广泛应用于疾病机制研究、新药靶点发现及筛选、药效评价、转化医学等医学前沿领域。动物模型的优越性主要表现在以下几下方面。(一)避免了在人身上进行实验所带来的风险(二)临床上平时不易见到的疾病可用动物随时复制出来(三)可以克服人类某些疾病潜伏期长，病程长和发病率低的缺点(四)可以严格控制实验条件，增强实验材料的可比性(五)可以简化实验操作和样品收集(六)有助于更***地认识疾病的本质

配制成6mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg分别在***天及第八天腹腔注射。实验建立大鼠卵巢早衰模型1.实验仪器及材料：如表1所示。表12.实验方法：①动物信息：sd大鼠，雌性，6-8周，体重180-220g。普通环境饲养，灭菌饲料饲养，自由饮水。②分组及给药剂量：如表2所示。表2③给药途径及频率：腹腔注射；2mg、3mg组连续注射7天；4mg、6mg组***天、第八天注射；对照组连续7天注射生理盐水。④病理检测：末次注射后15天，动物麻醉，采集血液，分离血清，elisa法测定血清中e2、fsh、lh水平变化情况。解剖动物，取卵巢组织称重，对大鼠的卵巢组织形态学进行观察。注射期间每天称重，给药后每周称重两次，每天进行阴道涂片检测动情周期。3.统计方法：采用graphpad进行统计分析。所有计量资料均采用均值±标准差表示采用单因素方差分析各组间均值的差异，p＜。4.试验结果：(3mg组注射完成后*存活一只，不进行统计)如表3、表4、图1、图2、图3所示：①***水平：与空白组相比，2mg组、4mg组、6mg组e2水平均降低，但是只有2mg组有明显降低(p＜)，如图1所示；与空白组相比，2mg组、4mg组、6mg组fsh水平均上升，只有2mg组有明显升高(p＜)，如图2所示；与空白组相比。明确研究疾病的独特资源确定小鼠疾病模型的初步选择。

图2是从侧面展示的压迫元件插入椎间孔的结构示意图。图3是术后大鼠四肢表现情况。图4是术后28天大鼠的双下肢缩足阈值变化曲线图。图5是重复经颅磁刺激对大鼠背根神经压迫模型的影响。具体实施方式以下通过具体的实施例对本发明的技术方案做进一步的描述。以下的实施例是对本发明的进一步说明，而不是限制本发明的范围。实施例1、模型的制备1、腹腔注射1％戊巴比妥钠(40mg/kg)麻醉大鼠(220-250g)，背部剃毛，碘伏消毒背部皮肤，俯卧位固定于动物手术台上，铺无菌巾。2、于大鼠腰4到骶1水平左侧作一2-3cm纵行切口，切开皮肤，钝性分离椎旁肌至横突上方，暴露腰4椎间孔，腰5椎间孔(椎旁肌可用自制拉钩保持分离状态)。3、将2根***端11为4mm，第二端12为2mm，直径为，第二端12置于腰4椎间孔及腰5椎间孔外。如图1和2所示，可以看到腰4锥体1、腰5锥体2、腰6锥体3、l型棒10、腰4神经根4和腰5神经根5的位置关系。当l型棒10的***端11插入腰4锥体1的腰4椎间孔后，会对腰4神经根4起到压迫作用；同样的，当l型棒10的***端11插入腰5锥体2的腰5椎间孔后，会对腰5神经根5起到压迫作用。从而达到模拟腰椎间盘突出压迫神经根的目的，制备得到大鼠慢性背根神经压迫模型。动物疾病模型的另一个富有成效的用途。常州小鼠疾病动物模型建模

这类动物疾病模型是指各种疾病共同性的一些病理变化过程的模型。静安区裸鼠疾病动物模型建模

即为本发明构建的一种pirb基因敲入的小鼠动物模型。本发明所采用第二种技术方案的特点还在于，步骤1中得到grna1和grna2后分别与trancrrna在25℃孵育10min形成二级结构。步骤3中grna1、grna2的浓度均为2～10pmol/ul，cas9蛋白的注射浓度为30～100ng/μl。步骤4中southern杂交采用bamhi和avrii核酸内切酶切割f1代杂合子小鼠的dna。本发明的有益效果是：本发明提供了pirb基因敲入的小鼠动物模型及其构建方法，本发明的小鼠动物模型对于pirb基因功能的研究和在体验证提供了良好的基础。分离自pirb基因敲入小鼠的细胞还可以用于研究pirb发挥调节作用的下游机制。通过pirb敲入动物模型与不同类型cre小鼠的杂交，可以用于研究ad不同***或不同细胞类型pirb的调节作用。静安区裸鼠疾病动物模型建模

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