pirb的功能和下游抑制性信号通路仍然未被阐明,因此迫切需要pirb的细胞和动物模型。目前对于pirb基因功能的研究,多采用可溶性的pirb的胞外段(pirbextracellularpeptide,pep)和抑制剂,或者采用慢病毒转染。前者受到是否能够透过血脑屏障和抑制剂效率的影响,后者慢病毒转染在原代细胞和在体的转染效率比较低,使研究pirb的功能受到极大的限制。为解决这些问题,我们通过crispr/cas9技术建立了pirb基因敲入小鼠,将pirb基因敲入c57bl/6j的rosa26位点,为研究pirb在免疫系统或者神经系统的作用和机制提供了很好的工具。技术实现要素:本发明的目的在于提供pirb基因敲入的小鼠动物模型。便于研究者按实验目的需要随时采取各种样品。浦东新区呼吸疾病动物模型建模
ng)=×片段碱基对数(单片段);适片段用量(ng)=×片段碱基对数(多片段)。注1:单片段重组反应,若单个插入片段的长度大于载体,则应将载体与插入片段的计算公式互换;注2:单片段重组反应,若单个插入片段的长度小于200bp,则插入片段应使用5倍的用量;注3:多片段重组反应,各个插入片段的用量应不少于10ng,使用上述公式计算适使用量低于此值时,直接使用10ng;注4:若按上述公式计算出的线性化载体用量低于50ng或高于200ng,建议按50ng或200ng用量使用;注5:线性化载体过长,插入片段过长或片段数过多,克隆阳性率均会降低。2、体系反应;1、配制完成后,用移液器轻轻吸打混匀各组分,避免产生气泡,切勿涡旋;2、将反应体系置于50℃,反应5~60min。3、将反应液离心管置于冰上冷却,之后进行转化或者储存于-20℃注1:推荐使用PCR仪等温控的仪器进行反应,反应时间不足或太长克隆效率均会降低;注2:插入1~2个片段时,推荐反应时间为5~1min;插入3~5个片段时,推荐反应时间为15~30min;注3:当载体骨架在10kb以上或插入片段总长在4kb以上时,推荐延长反应时间至30~60min;注4:建议在50℃反应完成后进行瞬时离心,将反应液收集至管底。注5:-20℃储存的重组产物。镇江肺病疾病动物模型建模可以严格控制实验条件,增强实验材料的可比性。
代谢组学的研究对象大都是相对分子量在1000以内的小分子物质,因此常用的血液样本在取样后,应小心操作,防止溶血,尽快分离出血清,分置于温环境下保存。由于用于病理实验的动物组织采集相对其他样品的采集,操作更繁琐,在处理过程中许多细节容易忽略,造成数据不完美(甚至不能用)。因此接下来将重点介绍组织样品采集的注意事项及其固定。组织样品采集注意事项组织应新鲜,操作时间尽可能短,否则细胞发生死后变化、自融及现象。是动物心脏还在跳动时采集,样本取出后在5分钟以内置于固定液内,避免长时间暴露在空气环境中。组织块尽量小而薄。组织块的厚度以不超过5mm为宜,较为理想的厚度为2mm左右,主要目的是使固定液迅速而均匀的渗入组织块内部。勿使组织块受挤压。在采集过程中,应尽量选择较为锋利的手术器械,如手术刀片等,避免操作过程中挤压挫伤标本。挤压过的组织均不可用。固定液的量一般以组织块大小的20倍为宜,组织能够在容器内自由移动。尽量保持组织的原有形态。新鲜组织经固定后,或多或少产生收缩现象(如胃肠),为此可将组织展平,以尽可能维持原形。保持组织清洁。组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等,可用生理盐水冲洗。
用PBS冲洗沉淀物,然后用Diff-Quik染色液染色,在光学显微镜下进行细胞分类,观察计数计数中性粒细胞、巨噬细胞和淋巴细胞。5.2.4肺损伤后的组织病理观察:取左肺4%多聚甲醛固定,然后将肺组织常规脱水,石蜡包埋,切片(厚度为5μm),HE染色。HE染色肺组织学评价可以直观的反应肺损伤的程度,ALI组织病理学主要表现为肺泡中性粒细胞及红细胞的渗出,肺泡壁透明膜的形成。HE染色后可在低倍镜下观察到整个左肺组织的炎症细胞浸润、水肿以及损伤,评估肺部损伤分布情况;而高倍镜下则可以对肺泡结构进行辨认,对肺损伤程度进行评估和评分。评分方法:取6个视野进行出血及水肿评分。0分:没有损伤1分:<25%的损伤面积2分:25%~50%的损伤面积3分:50%~75%的损伤面积4分:>75%的损伤面积如何定义好的小鼠疾病模型?
配制成6mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg分别在***天及第八天腹腔注射。实验建立大鼠卵巢早衰模型1.实验仪器及材料:如表1所示。表12.实验方法:①动物信息:sd大鼠,雌性,6-8周,体重180-220g。普通环境饲养,灭菌饲料饲养,自由饮水。②分组及给药剂量:如表2所示。表2③给药途径及频率:腹腔注射;2mg、3mg组连续注射7天;4mg、6mg组***天、第八天注射;对照组连续7天注射生理盐水。④病理检测:末次注射后15天,动物麻醉,采集血液,分离血清,elisa法测定血清中e2、fsh、lh水平变化情况。解剖动物,取卵巢组织称重,对大鼠的卵巢组织形态学进行观察。注射期间每天称重,给药后每周称重两次,每天进行阴道涂片检测动情周期。3.统计方法:采用graphpad进行统计分析。所有计量资料均采用均值±标准差表示采用单因素方差分析各组间均值的差异,p<。4.试验结果:(3mg组注射完成后*存活一只,不进行统计)如表3、表4、图1、图2、图3所示:①***水平:与空白组相比,2mg组、4mg组、6mg组e2水平均降低,但是只有2mg组有明显降低(p<),如图1所示;与空白组相比,2mg组、4mg组、6mg组fsh水平均上升,只有2mg组有明显升高(p<),如图2所示;与空白组相比。明确研究疾病的独特资源确定小鼠疾病模型的初步选择。崇明区非酒肝疾病动物模型建模
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r3):5’-atactccgaggcggatcacaa-3’步骤4、鉴定为pirb基因敲入的f0代雄性小鼠7周龄、雌性小鼠6周龄分别与野生型异性小鼠交配获得f1代杂合子小鼠,图2为本发明f1代杂合子小鼠pirb基因敲除小鼠的流程图,小鼠出生后20天进行pcr鉴定,若有阳性小鼠出生,则表示转基因已经整合到生殖细胞。(1)通过pcr方法对获得的f1代小鼠进行基因型的鉴定:(a)dna的提取:方法1:采用takaraminibestuniversalgenomicdnaextractionkit()来获得高纯度的基因组dna。步骤a.每只小鼠剪下一段尾巴(2~5mm),放入离心管中,加入180μlbuffergl,20μl蛋白激酶k和10μlrnasea。步骤b.将步骤a离心管内于56℃孵育过夜。步骤c.过夜后12000rpm离心2min去除杂质。步骤d.加入200μlbuffergb和200μl无水乙醇,充分混匀。步骤e.将吸附柱放在收集管上,将步骤d得到的样品加到吸附柱里,12000rpm离心2min,弃掉收集管中液体。步骤f.弃去液体后在吸附柱中加入500μlbufferwa,12000rpm离心1min,弃掉收集管中液体。步骤g.在收集管中加入700μlbufferwb,12000rpm离心1min。弃掉收集管中液体。注意:bufferwb需要与100%乙醇预混,沿管壁加入bufferwb冲走残余的盐。步骤h.重复步骤g一次。浦东新区呼吸疾病动物模型建模
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