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上期我们主要讲解了细胞凋亡的早期检测方法，这期主要讲解一下细胞凋亡晚期中，核酸内切酶（某些Caspase的底物）在核小体之间剪切核DNA，产生大量长度在180-200bp的DNA的片段。1、凋亡DNALadder检测试剂盒细胞经处理后，采用常规方法分离提纯DNA，进行琼脂糖凝胶和溴化乙啶染色，在凋亡细胞群中可观察到典型的DNAladder。QuickApoptoticDNALadderDetectionKit可以快速（约1-2小时）、灵敏地检测凋亡细胞中的DNA的片段。2、TUNEL-basedDNA的片段分析试剂盒细胞凋亡中,染色体DNA双链断裂或单链断裂而产生大量的粘性3-OH末端，可在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）的作用下，将脱氧核糖核苷酸和荧光素、过氧化物酶、碱性磷酸酶或生物素形成的衍生物标记到DNA的3-末端，从而可进行凋亡细胞的检测。Apo-BrdUTM分析使用2种颜色的TUNEL方法用流式细胞仪检测凋亡细胞中DNA条带。采用的BrdU比生物素标记的或地高辛（digoxigenylated）标记的方法灵敏度更高。3、Caspase分析试剂和试剂盒Caspase在细胞凋亡中发挥着重要的作用，属于天冬氨酸蛋白酶。其中caspase-3为关键的执行分子，它在凋亡信号传导的许多途径中发挥功能。在正常状态下，caspase家族都以无活性的酶原。小鼠的肝细胞通常是指小鼠的肝实质细胞。浙江提供原代细胞分离培养优势

并进质粒抽提。GAG质粒和VSV质粒同样可以转化至感受态细菌DH5α中，并进行无内质粒抽提。质粒抽提后冷冻于-20℃保存。2、慢病毒包装1)使用DMEM完全培养基培养6cm皿HEK293T至汇合度为70~80%。采用opti-MEM和Lipo3000分别转染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG质粒及对照载体，每皿加入脂质体-质粒转染混悬液按购买脂质体相关说明书操作定量。继续培养24h。2)24小时后，将培养基更换为新鲜的DMEM完全培养基，放进细胞培养箱继续培养48~72h。3)48~72h后收集上层培养液，并过μm滤膜，采用ELISA法对所获得的慢病毒载体进行病毒滴度测定。如不及时使用可以冻存于-80℃。3、慢病毒转染1)转染前1天将细胞接种6孔培养板，时细胞的融合率约为50%，前需换液，加入1mLDMEM完全培养基。2)病毒冰浴融化后加入相应体积的病毒液及聚凝胺（Polybrene），混匀后放入37℃孵箱中继续培养3)4h后补充1mL培养基，14h后换液（24h内换液即可）。4)病毒72h后用倒置显微镜观察荧光，监测效率，出现较多荧光时将等量的转染细胞和未转染细胞分别加入等浓度Puromycin（Puromycin或其他筛选浓度需要事先摸索）。5)待未转染细胞全部死亡并且可观察到满意荧光量时，降低Puromycin浓度培养。浙江纤维化原代细胞分离培养原理SD大鼠肾足细胞如何分离培养。

把培养瓶置于倒置显微镜下观察，如大部分细胞变圆，立即移除胰酶消化液（如大部分细胞漂起，可不移除胰酶消化液），加入5ml预热完全培养基，用吸管取培养液吹打瓶壁细胞，使其脱离瓶壁形成单细胞悬液，离心，小心移除上清；3、加入5ml预热完全培养基，吹打重悬细胞用细胞计数板在显微镜下计算细胞数，分装入T25培养瓶中，添加基至总体积为5ml，置于37℃、5%CO2培养箱中培养；传代1次。注意事项1.熟知所养细胞的生长密度极限；2.次进行所养细胞传代时，消化时必须把培养瓶置于倒置显微镜下观察，并记录所需时间，下次按照该时间执行即可；3.进行细胞传代时必须结合考虑细胞生长密度需求（启动正常生长所需的密度）和实际的工作需求，在满足细胞生长密度需求的前提下，需要多少瓶就传多少瓶，降低工作强度和试剂耗材消耗；4.离心速度和时间依据具体细胞决定。四.细胞冻存保种1、提前配制冻存液：用血清或完全培养基配制5-10%DMSO（根据具体细胞决定）冻存液；2、消化收取细胞：当细胞密度即将达到其生长密度极限时进行换液，第二天，移除旧培养液，用PBS洗涤两次（旧培养中的钙离子会抑制胰酶的活性），加入1ml胰酶消化液（以T25培养瓶为例），立即盖好盖子。

如何判断是否加入了合适体积的Matrigel：我们只需用一张格子纸就能知道自己的移液调整到多少能正好把下孔填满。如上图所示，垂直透过每个孔看下面的格子纸，如果格子被缩小了，那么就说明胶没加满，格子被放大了，那么胶就加多了，格子没发生什么变形，这才是刚刚加满下孔的状态。2、凝胶1）盖上ibidi血管生成载玻片的盖子。2）准备一个10cm的培养皿，放入浸过水的纸巾，制成一个湿盒。3）将ibidi血管生成载玻片放入培养皿中，盖上培养皿盖。4）将整个培养皿放入培养箱中，静置30分钟左右，等待胶凝结。5）等待同时准备细胞悬液。3.铺细胞加入细胞的量直接影响实验结果，所以在正式实验开始之前，要对不同类型的细胞和使用数量进行预实验。获得比例的细胞密度。我们的实验使用HUVEC细胞，每孔种10000个细胞即可。1）准备密度为2×105的细胞悬液，充分混匀。2）将胶已经凝固的ibidi血管生成载玻片从湿盒中取出。3）每孔加入50μl的细胞悬液，注意保持头垂直在上孔的上方，不要接触下孔的凝胶。可以使用排。4）同样用格子纸查看是不是加了足够量的液体，如果没有，加入无细胞的培养基，使上孔液体正好加满。5）盖上盖，静置，一段时间后。心肌的工作细胞包括心房肌和心室肌。心肌细胞为短柱状，一般只有一个细胞***肌细胞之间有闰盘结构。

流式细胞检测工作原理是在细胞分子水平上通过单克隆抗体对单个细胞或其他生物粒子进行多参数、快速的定量分析。它可以高速分析上万个细胞，并能同时从一个细胞中测得多个参数，具有速度快、精度高、准确性好的优点，是当代先进的细胞定量分析技术之一，下面就由上海东寰给大家简要介绍。光源、液流通路、信号检测传输和数据的分析系统是流式细胞仪的主要组成。目前临床中运用流式细胞仪进行外周血白细胞、骨髓细胞等检测是临床检测的重要组成部分。流式细胞仪主要由四部分组成。它们是：流动室和液流系统；激光源和光学系统；光电管和检测系统；计算机和分析系统。上图为其结构示意图。流动室由样品管、鞘液管和喷嘴等组成，常用光学玻璃、石英等透明、稳定的材料制作。设计和制作均很精细，是液流系统的心脏。样品管贮放样品，单个细胞悬液在液流压力作用下从样品管射出；鞘液由鞘液管从四周流向喷孔，包围在样品外周后从喷嘴射出。为了保证液流是稳液，一般限制液流速度υ<10m/s。由于鞘液的作用，被检测细胞被限制在液流的轴线上。流动室上装有压电晶体，受到振荡信号可发生振动。流式细胞仪是对细胞进行自动分析和分选的装置。刚分离的肺成纤维细胞呈圆形，较亮，培养40min左右贴壁。安徽泌尿原代细胞分离培养购买

肝星状细胞主要位于Disse间隙腔中，紧贴着肝窦内皮细胞和肝细胞，形态不规则。浙江提供原代细胞分离培养优势

使其形成利于核酸进入的微孔。C.逆转录病毒（RNA）：通过病毒中膜糖蛋白和宿主细胞表面的受体相互作用进入宿主细胞，之后反转录酶启动合成DNA并随机整合到宿主基因组中。特点：稳定转染，可用于难转染的细胞、原代细胞，体内细胞等，但携带基因不能太大。D.腺病毒（双链DNA）：先和细胞表面的受体结合，继而在αV整合素介导下被细胞内吞。特点：可用于难转染的细胞。2、影响转染的因素血清：血清影响复合物的形成，降低转染效率。阳离子脂质体和DNA的量在使用血清时会有所不同，因此想在转染培养基中加入血清时要进行条件优化。大部分细胞可以在无血清培养基中几个小时内保持健康。：比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。细胞代数：转染前细胞经过1-2次传代保证细胞生长旺盛容易转染，注意贴壁细胞一旦长满就不好转染。细胞铺板密度：一般转染时，贴壁细胞密度为70%-90%，悬浮细胞密度为2*10^6--4*10^6细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。浙江提供原代细胞分离培养优势