如何降低检测试剂盒实验的误差概率？检验技师。应具备从事实验室操作的基本素质和实践经验。能熟练操作实验仪器、器械，具有一定总结和分析问题的能力，对实验中出现的意外情况能及时妥善解决。使用校对过的微量移液器，排除自然误差。移液器准确与否对定量检测尤为重要。仔细阅读说明书。严格按照说明书要求进行规范化操作。检测试剂盒不同批号的试剂不可混用。值得改进的地方，反复试验确定成立后才能改进。洗涤干净。洗板不干净，酶结合物本底显色会呈现假阳性。洗涤液要新鲜，现用现配，陈旧的洗涤液会出现本底增高现象，也可能出现假阳性。科研实验中试剂取用应注意事项：视线与量筒内液体的凹液面的低处保持水平。Tris-EDTA缓冲液(0.1×TE,pH7.0-9.0)
Tricine加样缓冲液(2×)使用说明书 说明书：①试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。②实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。③使用一次性的吸头以免交叉污染，吸取终止液和底物A、B液时，避免使用带金属部分的加样器。④加入试剂的顺序，以保证所有反应板孔温育的时间一样。⑤按说明书中标明的时间、加液的量及顺序进行温育操作。Tricine加样缓冲液(2×)：产品规格：5ml。分类：电泳蛋白。储存条件：—20℃,12个月。用途：又称三羟甲基甘氨酸加样缓冲液,Tris-tricine缓冲系统的PAGE电泳。注意事项：主要由Tris-HCl、DTT、G-250等组成。HEPES缓冲液(1×,含钙镁)PBS是磷酸缓冲盐溶液(phosphate buffer saline)一般作为溶剂。
食品检测检测试剂盒样品收集、处理及保存方法：血清-----操作过程中避免任何细胞刺激。使用不含热原和内毒液的试管。收集血液后，1000×g离心10分钟将血清和红细胞迅速小心地分离。血浆-----EDTA、柠檬酸盐、肝素血浆可用于检测。1000×g离心30分钟去除颗粒。细胞上清液---1000×g离心10分钟去除颗粒和聚合物。保存------如果样品不立即使用，应将其分成小部分-70 ℃保存，避免反复冷冻。尽可能的不要使用溶血或血脂高血。如果血清中大量颗粒，检测前先离心或过滤。不要在37℃或更高的温度加热解冻。应在室温下解冻并确保样品均匀地充分解冻。
校准液标示值往往是按其基质偏差修正的，所以标示值并非实际值。校准液、质控血清通常是经过处理的混合人或动物血清，这种制备物在特定分析系统中往往与人新鲜血清反应性不同而产生基质偏差。如总胆固醇测定基质效应研究指出：校准液酶法测定回收结果偏低可达5%~7%。甘油三酯测定，有人主张选用双试剂方法消除内源性甘油，这个方法是可行的，但忽视了一个化学平衡理论。因为所有的酯在水溶液中都不是简单地以酯的形式存在，而是以水解与酯化相平衡的形式存在。在一个平衡体系中，如果去除游离甘油，这个平衡就向生成甘油方向移动，甘油三酯就会重新水解，生成新的甘油，达到新的平衡，因此样品与R1试剂孵育时间越长，测得甘油三酯值就越低。甘油三酯测定，不只要去除游离甘油，而且还要克服样本含量真实性发生的变化，试剂中必须加入甘油激酶，并且延迟时间要标准化。所以，一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。检测试剂盒液体悉数参加酶标孔后，将酶标板放在桌子上平行悄悄摇晃30s。
试剂空白吸光度是反映试剂质量的指标之一，但不能反映试剂质量的全部。试剂成份、纯度、用量及稳定性，才是保证试剂质量的关键所在。目前市售的一些试剂具有抗干扰作用，主要是通过加入抗干扰物质或使用新的色素原以避免内源性物质的干扰。但值得注意的是：一些试验项目在消除内源性物质干扰的同时，会带来样品含量真实性的变化。 线性范围变窄 现象：高值测不高。原因：生产试剂时有效成分投料量不足;试剂成份稳定性较差。灵敏度变低现象：酶促反应速度曲线斜率下降，测定结果有严重系统误差。原因：试剂底物浓度不足。液体试剂易于分剂量，服用方便。免疫血清防腐剂(10×)
液体试剂可以减少某些药物的刺激性。Tris-EDTA缓冲液(0.1×TE,pH7.0-9.0)
PAGE连续蛋白上样缓冲液，科研专门***科研实验中试剂取用应注意事项：1. 固体试剂的取用:取用固体药品时药匙必须是干净的.一支药匙不能同时取用两种或两种以上的试剂.药匙每取完一种试剂后都必须用干净的纸擦拭干净,以备下次使用.药匙的两端为大小两匙,取固体量较多时用大匙,较少时用小匙2. 取用不定量(较多)液体——直接倾倒a. 瓶塞必须倒放在桌面上【防止药品腐蚀实验台或污染药品】；b. 直接倾倒时瓶口必须紧挨试管口，试管45度，并且缓缓地倒【防止药液损失】；c. 贴标签的一面必须朝向手心处【防止药液洒出腐蚀标签】。Tris-EDTA缓冲液(0.1×TE,pH7.0-9.0)
