单个核细胞分离步骤：Ficoll试剂混匀：首先将Ficoll试剂瓶颠倒多次混匀，使用注射器法吸取Ficoll分离液（去掉聚丙烯盖，插入注射器针头）或吸管法吸取Ficoll分离液（去掉聚丙烯盖，拉起铝环，拉开金属密封，移除银环。拿掉橡胶密封，无菌操作吸取需要的Ficoll分离液）。1.离心管加入3mLFicoll分离液。2.稀释过的血液样本小心铺到Ficoll分离液上面。注：缓慢加入样本，小心不要和Ficoll分离液混合，勿搅动。1.室温条件，水平转子离心400g，离心30-40min，可见细胞分层。2.用无菌吸管吸掉上层血浆和血小板，不要碰到单个核细胞层。3.无菌吸管转移单个核细胞层到无菌离心管。科研实验中试剂取用应注意事项：取液后的滴管，应保持橡胶胶帽在上，不要平放或倒置。阿氏液(Alsever's Solution)
为了避免溶液洒出，同时不要让溶液在刻度线上面沿瓶壁流下，用玻璃棒引流。为保证溶质尽可能全部转移到容量瓶中，应该用蒸馏水洗涤烧杯和玻璃棒二、三次，并将每次洗涤后的溶液都注入到容量瓶中。轻轻振荡容量瓶，使溶液充分混合。(用玻璃棒引流)定容：加水到接近刻度2-3厘米时，改用胶头滴管加蒸馏水到刻度。定容时要注意溶液凹液面的低处和刻度线相切，眼睛视线与刻度线呈水平，不能俯视或仰视，否则都会造成误差。 摇匀：定容后的溶液浓度不均匀，要把容量瓶瓶塞塞紧，用食指顶住瓶塞，用另一只手的手指托住瓶底，把容量瓶倒转和摇动多次，使溶液混合均匀。阿氏液(Alsever's Solution)试剂的稳定性对准确度非常重要。
稳定转染细胞的筛选：1、转染48 h后，用含适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞（直接传代或者稀释后传代）。注意：细胞处于活跃分裂状态时的杀伤效果较好。但细胞过于稠密，其效率会降低，较好将细胞稀释至丰度低于25%。2、每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。3、筛选7天后观察并评估细胞克隆（集落）的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间（取决于宿主细胞类型，转染，以及筛选效果）。4、挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板，继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。5、后续更换正常培养基培养即可。
缓冲溶液的计算分为两大类：（1）已知共轭酸碱的浓度或质量，计算pH值。（2）已知pH值，计算配制时要满足的浓度和质量配制缓冲溶液时，有多种组合的方法，常见的有以下几种（1）两种溶液混合：如，NH3+NH4Cl溶液，NaOH溶液 +NH4Cl溶液，NH3+HCl溶液。（2）固体试剂+溶液：如，NH3+NH4Cl固体，NaOH固体 +NH4Cl溶液，HAc+NaAc固体。（3）两种固体试剂溶解混合：如，NaOH固体 +NH4Cl固体，Na2CO3固体+NaHCO3固体。由此可见，缓冲溶液的计算类型是很丰富的。实验中的配制一般是按共轭酸碱的量来称取或量取试剂后，再溶解混合到指定体积。但分析化学学习中的计算类型则可以演绎出十几种计算情况。检测试剂盒是用于体外定性检测人血清或血浆中的抗人类戊型肝炎（HEV）病毒IgM抗体检测。
检测试剂盒试验忌讳：浓洗刷液或许会有结晶析出，检测试剂盒稀释时可在水浴中加温助溶，洗刷时不影响成果。如标本中待测物质含量过高（样本OD值大于标准品孔孔的OD值），请先将样本稀释必定倍数（n倍）后再测定，计算时请终乘以稀释倍数（×5×n）。各步加样均应运用加样器，并常常校正其正确性，以防止试验误差。一次加样时间好控制在5分钟内，如标本数目多，举荐运用排加样。封板膜只限一次性运用，以防止交叉污染。严格按照说明书的操作进行，检测试剂盒试验成果断定有必要以酶标仪读数为准。从冷躲环境中取出应在室温平衡15-30分钟后方可运用，酶标包被板开封后如未用完，板条应装进密封袋中保存。丁胺卡那霉素给药说明：5%葡萄糖注射液或其他灭菌稀释液100—200ml。过氧化氢(H2O2)检测试剂盒(硫酸钛比色法)
如果菌种为液体培养物，则可用无菌吸管定量吸出加入或直接倒入液体培养基。阿氏液(Alsever's Solution)
检测试剂盒样品收集: 细胞培养上清：取细胞培养上清于1000×g离心20分钟，除去杂质及细胞碎片。取上清检测。其它生物样品：1000×g离心20分钟，取上清即可检测。样品应清澈透明，悬浮物应离心去除。样品收集后若在1周内进行检测的可保存于4℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃(1个月内检测)，或-80℃（6个月内检测），避免反复冻融。如果您的样品中检测物浓度高于标准品高值，请根据实际情况，做适当倍数稀释（建议先做预实验，以确定稀释倍数）。阿氏液(Alsever's Solution)
