外泌体(Exosome)是细胞主动分泌的囊泡样小体,大小均一,直径30-200nm,密度1.10-1.18g/ml,来源普遍,几乎所有细胞都可分泌,在血液,尿液,唾液,脑脊液,腹水,乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。1996年,研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应,开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受?欢迎,但过程比较费时,且回收率不稳定,纯度也受到质疑。外泌体的提取分离:试剂盒提取。广州正规外泌体提取试剂供应商
外泌体(Exosomes)是细胞分泌到胞外的一种囊泡(ExtracellularVesicles,EVs),其大小为30-150nm,具有双层膜结构和茶托状形态,含有丰富的内含物(包括核酸、蛋白和脂质等),参与细胞间的分子传递。外泌体普遍存在于细胞培养上清以及各种体液中,包括血液、唾液、尿液、乳汁等,同时也存在于组织样本中,如脑组织、肌肉组织、脂肪组织等。脑组织分离方法简述:将脑组织剪成薄片,放入离心管中加上消化液进行消化,经水浴、反复轻轻上下颠倒,再用移液间断缓慢吹吸至消化结束。随后加入培养基于消化液中,混匀,置于冰上。再进行一系列的差速超速离心过程,包括除杂、滤膜过滤、超离等。较后用PBS重悬外泌体,用重悬后的外泌体进行下面的透射电镜(TEM)、纳米粒径追踪分子(NTA)和markerWB鉴定。来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体,经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。广州正规外泌体提取试剂供应商利用化合物沉淀将法外泌体沉淀出来。
外泌体的提取方法,先用含无外泌体血清的培养基对人脂肪来源间充质干细胞进行饥饿培养,这样可使干细胞处于正常生长状态,不会被克制生长增殖,其所分泌的外泌体所包含的有效物质也更贴近其自然状态下的外泌体,然后将含有外泌体的培养上清液进行低速差速离心(即先一离心处理、再第二离心处理)以去除细胞及其碎片,用100kd超滤管对低速差速离心后的离心液进行超滤浓缩得到外泌体浓度更高的超滤液,将超滤液经过第三离心处理去除杂质后直接用0.22μm过滤器过滤除菌,过滤掉粒径为220nm以上的物质,进一步得到含颗粒粒径小于220nm的浓缩液,因超滤浓缩处理和第三离心处理使得液体量浓缩,这样过滤除菌效率得到较大提高,较后将浓缩液进行超速离心的第四离心处理分离提取到外泌体。该外泌体的提取方法,既结合了差速离心,又结合了超滤和超速离心,通过该提取流程,较终可高效地从人脂肪来源间充质干细培养上清液中提取到高浓度、高纯度的外泌体,具有操作简单、成本低,适合产业化生产的特点。
有的外泌体分离方法需要高速离心,需要使用大型机器,耗费近24小时的时间才能获得,非常不便。而高离心力也可能破坏囊泡。降低样品的质量。这项研究有望解决这一难题。在论文中,研究人员们提供了一种通过微流体和声学的独特组合从体液样品中捕获外泌体的新颖方法。他们开发的原始声学分选装置由两个倾斜的声学换能器和一个微流体通道组成,当这些传感器产生的声波相互碰撞时,形成产生一系列压力节点的驻波。每当细胞或颗粒流过通道并遇到一个节点时,压力会将细胞引导离开中心一点点。细胞移动的距离取决于大小和其他属性(如可压缩性),这样,当到达通道末尾时,不同大小和性质的细胞就能够被分离开来。这种方法分离得到的外泌体,基本上不改变其生物或物理特征,为开发评估人类健康以及疾病诊断和进展提供了有吸引力的新方法。外泌体的提取方法:多聚物沉淀法。
外泌体提取:1、过滤。超滤膜也可用于分离外泌体。根据外泌体的大小,从蛋白质和其他大分子中分离外泌体。较常见的过滤膜具有0.8μm、0.45μm或0.22μm的孔径,可用于收集大于800nm、400nm或200nm的外泌体,也有设计成微柱多孔硅纤毛结构以分离40-100nm外泌体:不过,该方法由于过滤膜的粘附,可能会损失外泌体,并且过滤时的压力和剪切力,可能会使外泌体变形受损。2、基于聚合物的沉淀技术。基于聚合物的沉淀技术通常包括将样本与含聚合物的沉淀溶液混合,在4℃温育并低速离心。用于聚合物沉淀的较常见聚合物之一是聚乙二醇(PEG)。用这种聚合物沉淀具有许多优点,包括对分离的外泌体影响小、pH中性等。目前大多数快速分离外泌体的商品化试剂盒都是基于此方法。然而基于聚合物的沉淀方法可能会同时分离非囊泡污染物(包括脂蛋白)而且,聚合物材料的混杂可能会影响下游分析。外泌体提取:超离法是较常用的外泌体纯化手段,采用低速离心、高速离心交替进行。广州正规外泌体提取试剂供应商
外泌体提取:尺寸排阻色谱。尺寸排阻色谱是基于大小而非分子量实现分离大分子。广州正规外泌体提取试剂供应商
外泌体的提取、分离方法:开发高效、快速、稳定,并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法,是目前外泌体应用于临床的基础和前提。从细胞上清和体液中提取分离外泌体的方法很多,但是外泌体的纯度和产量却和分离方法息息相关。通常分离步骤少、产率高,但是纯度会受到影响。鉴于每种分离方法都有其优缺点,实验可以根据样本来源、下游实验目的等,选择合适的外泌体分离方法。2015年,国际囊泡组织(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出,简单依靠一种分离方法得到的外泌体的纯度和产量都难满足实验的需求。因此,推荐联合使用各种方法,从而得到高纯度和高产量的外泌体。广州正规外泌体提取试剂供应商
外泌体的提取分离:1、PEG-base沉淀法。聚乙二醇(PEG)可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀,早先应用于从血清等样本中收集病毒,现在也被用来沉淀外泌体,其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题:比如纯度和回收率低,杂蛋白较多(假阳性),颗粒大小不均一,产生难以去除的聚合物,机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等,因此发表文章时易受质疑。2、试剂盒提取。近几年来,市场上已出现各种商业化的外泌体提取试剂盒,有的是通过特殊设计的过滤器过滤掉杂质成分,有的则采用空间排阻色谱法(SEC)进行分离纯化,也有的则利用化合物沉淀将法外泌体沉淀出来。这些试剂盒不需要...