检测试剂盒实验经验分析：要保证移液的准确性，误差不能超过2%。可用水和天平">电子天平进行校正。校正方法自己放狗吧，但有专业人员进行矫正。要配备20ul、50ul、100ul、1000ul和排各一支（靠，基本是废话了）。吸取不同的液体后，要更换头。即使是吸取标准品时（应该是特别是！）。要在实验前1小时将检测试剂盒从冰箱中取出，使各种试剂都恢复到室温，以使结果更稳定（这个是容易忽视的！）。实验时，要使底物避光保存。用吸取液体时速度不能太快，以免产生气泡而使吸取量不准确。检测试剂盒太屡次的洗刷会下降信号强度。DF培养基
检测试剂盒样品收集:血清：全血样品于室温放置2小时或4℃过夜后于1000×g离心20分钟，取上清即可检测，收集血液的试管应为一次性的无热原，无内毒液试管。血浆：抗凝剂推荐使用EDTA-Na2，样品采集后30分钟内于1000×g离心15分钟，取上清即可检测。避免使用溶血，血脂高样品。组织匀浆：用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织，去除残留血液（匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果），称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS（一般按1:9的重量体积比，比如1g的组织样品对应9mL的PBS，具体体积可根据实验需要适当调整，并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂）加入玻璃匀浆器中，于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞，可以对匀浆液进行超声破碎，或反复冻融。后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟，取上清检测。强磷酸盐缓冲液(PBS,pH7.2)实验室分装时，固体只标明试剂名称，液体还须注名明浓度。
标准物质的正确使用:不确定度表示被测量值的分散性，不同的标准物质其特性的不确定度也不同。在选择标准物质时应当考虑其对考虑其对预期分析结果要求的不确定度水平的影响。除生产者确定的不确定度外，标准样品的不同处理过程也会影响分析结果的不确定度，例如标准物质与分析样品基体之间有差异时，或使用与标准物质定值方法不同的分析方法时，可能其不确定度与生产者提供的会有差异。使用标准物质时，其不确定度并不是越小越好，还应当考虑供应状况、成本、预期使用的化学适用性和物理适用性。
检测试剂盒样品收集: 细胞培养上清：取细胞培养上清于1000×g离心20分钟，除去杂质及细胞碎片。取上清检测。其它生物样品：1000×g离心20分钟，取上清即可检测。样品应清澈透明，悬浮物应离心去除。样品收集后若在1周内进行检测的可保存于4℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃(1个月内检测)，或-80℃（6个月内检测），避免反复冻融。如果您的样品中检测物浓度高于标准品高值，请根据实际情况，做适当倍数稀释（建议先做预实验，以确定稀释倍数）。检测试剂盒标本的重复冻融所发作的机械剪切力将对标本中的蛋白等分子发作损坏效果。
如何正确保存和使用pH缓冲溶液：缓冲溶液配制后，应装在玻璃瓶或聚乙烯瓶中（碱性pH缓冲液，如，pH=9.18、pH=10.01、pH=12.46等，应装在聚乙烯瓶中）瓶盖严密盖紧，在冰箱中低温(5～10℃)保存，一般可使用六个月左右，如发现有混频器浊，发霉或沉淀现象，不能继续使用。使用时，应准备几个50mL的聚乙烯小瓶，将大瓶中的组冲溶液倒入小瓶中，并在环境温度下放置1～2个小时，等温度平衡后再使用。使用后不得再倒入大瓶中，以免污染，瓶中的缓冲溶液在＞10℃的环境条件下可以使用2～3天，一般pH=7.00、pH=6.86、pH=14.00三种溶液使用时间可以长一些，pH=9.18和pH=10.01溶液由于吸收空气中的二氧化碳，其pH值比较容易变化。科研实验中试剂取用应注意事项：当向量筒中倾倒液体接近所需刻度时，停止倾倒。固绿染色液(0.5%)
检测试剂盒有稳定的重复性和可靠性。DF培养基
缓冲溶液的计算分为两大类：（1）已知共轭酸碱的浓度或质量，计算pH值。（2）已知pH值，计算配制时要满足的浓度和质量配制缓冲溶液时，有多种组合的方法，常见的有以下几种（1）两种溶液混合：如，NH3+NH4Cl溶液，NaOH溶液 +NH4Cl溶液，NH3+HCl溶液。（2）固体试剂+溶液：如，NH3+NH4Cl固体，NaOH固体 +NH4Cl溶液，HAc+NaAc固体。（3）两种固体试剂溶解混合：如，NaOH固体 +NH4Cl固体，Na2CO3固体+NaHCO3固体。由此可见，缓冲溶液的计算类型是很丰富的。实验中的配制一般是按共轭酸碱的量来称取或量取试剂后，再溶解混合到指定体积。但分析化学学习中的计算类型则可以演绎出十几种计算情况。DF培养基
