杀灭曲线的建立：通过建立杀灭曲线（剂量反应曲线），确定能够杀死未转染宿主细胞的较低浓度，从而筛选得到稳定表达目的蛋白的细胞株。建立杀灭曲线至少选择5个浓度。1、按照20-25%的细胞密度将未转化的细胞铺在合适的培养板上，37℃，CO2过夜培养（需要更高密度，可增加接种量）。2、根据细胞类型，设定合适的浓度梯度。以哺乳动物细胞为例，可设定50，100，250，500，750，1000μg/mL。3、第2天换用新鲜配制的含有相应浓度药物的培养基，每个浓度做三个平行孔。4、接下来每3-4天更换新的含药物培养基。5、按照每2天进行活细胞计数，来确定杀灭未转染细胞的恰当浓度。通常7-10天内能够杀死绝大多数细胞的较低浓度为筛选用的工作浓度。检测试剂盒操作注意事项：实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。核酸沉淀溶液(焦磷酸钠法)
检测试剂盒安全性：试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。不用的其它试剂应包装好或盖好。不同批号的试剂不要混用。保质前使用。使用一次性的吸头以免交叉污染，吸取终止液和底物A、B液时，避免使用带金属部分的加样器。使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀检测试剂盒里的各种成份及样品。洗涤酶标板时应充分拍干，不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。底物A应挥发，避免长时间打开盖子。总抗氧化能力(T-AOC)检测试剂盒(FRAP微板法)固体试剂的取用:取用固体药品时药匙必须是干净的。
稳定转染细胞的筛选：1、转染48 h后，用含适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞（直接传代或者稀释后传代）。注意：细胞处于活跃分裂状态时的杀伤效果较好。但细胞过于稠密，其效率会降低，较好将细胞稀释至丰度低于25%。2、每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。3、筛选7天后观察并评估细胞克隆（集落）的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间（取决于宿主细胞类型，转染，以及筛选效果）。4、挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板，继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。5、后续更换正常培养基培养即可。
严控反应时间。反应时间过长，酶失活；反应时间过短，酶结合物不能与血清中的微生物抗原抗体充分结合，生成物结构松散不牢固，容易洗掉，都可能造成假阴性。注意检测试剂盒保存期，过保存期的试剂不能使用。评估试剂的实用性。试剂的稳定与否，对准确率的高低到头重要。在试剂启用前，应进行阴、阳对照及样品反复比照试验，判定试剂符合要求后方可使用。严格掌握显色时间。显色时间过短，加入终止液反应终止后，底物结合物的量过少，易出现假阴性。超过显色要求时间后显色，应判为假阳性，这可能与试剂本身有关。加显色剂后立即显色，不可报阳性，这可能是本底显色的结果。BMC原代分离步骤：较上面是血浆，血浆层和淋巴细胞分离液之间是淋巴细胞层呈白膜状。
检测试剂盒实验经验分析：吸取液体时，要用量程和需要量接近的去吸，减少误差。将液体加到酶标孔中时，避免头和孔内液体接触，可使头上的液滴和孔壁接触，液滴会自然流下去（应该是加样的时候，板上稀释不算的吧）。液体全部加完后，可将酶标板在桌子上平行轻轻晃动30秒，混匀液体。也可以用酶标仪的晃动功能（注意是平行晃动，即上下or左右）。温浴时，要用不干胶或胶带纸封好酶标板，防止水分的蒸发（老办法是放入湿盒内，纱布加点无菌水即可）。常用荧光显微镜观测,可以透过完整的细胞膜。阿拉伯胶水溶液(25%)
检测试剂盒以免疫学反应为根底。核酸沉淀溶液(焦磷酸钠法)
非极性溶剂。脂肪油：脂肪油系指麻油、豆油、棉籽油、花生油等植物油。能溶解油溶性的药物，本品多用于外用液体试剂，如洗剂、搽剂等。脂肪油易氧化、酸败。液体石蜡：本品为饱和烷烃化合物，化学性质稳定。可分为轻质与重质两种，能与非极性溶剂混合，能溶剂生物碱、挥发油及一些非极性的药物等，在胃肠代中不分解不吸收，有润肠通便的作用。可做口服制剂与搽剂的溶剂。油酸乙酯：本品是油溶性的药物的常用溶剂。在空气中易氧化、变色，故使用时常加入抗氧剂。乙酸乙酯：无色油状液体，微臭。具有挥发性、可燃性。在空气中容易氧化、变色，需要加入抗氧剂。核酸沉淀溶液(焦磷酸钠法)
