注意事项：1.全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得较佳的实验结果，较好在取样 2h内进行实验，样品存放时间越长，细胞分离效果越差。样品放置超过 6h后分离效果更差甚至不能达到分离目的。2.本实验较好不要使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离 心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面 会变成毛面，影响细胞分离效果。3.吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒 细胞数量增加。4.分离液用量大于组织单细胞悬液样本时，分离效果更佳。检测试剂盒在检测试剂盒中一般有3次加样步聚。立克次体染色液(改良Macchiavello法)
试剂盒实验技巧：浓洗刷液或许会有结晶分出，检测试剂盒稀释时可在水浴中加温助溶，洗刷时不影响效果。如标本中待测物质含量过高（样本OD值大于标准品孔*孔的OD值），请先将样本稀释一定倍数（n倍）后再测定，核算时请后乘以稀释倍数（×5×n）。各步加样均应运用加样器，并经常校正其正确性，以避免实验误差。一次加样时间控制在5分钟内，如标本数目多，举荐运用排加样。封板膜只限一次性运用，以避免交叉污染。严格按照说明书的操作进行，检测试剂盒实验效果断定有必要以酶标仪读数为准。免疫染色封闭液校准液标示值往往是按其基质偏差修正的，所以标示值并非实际值。
缓冲溶液的配制和应用：为了配制一定pH的缓冲溶液，首先选定一个弱酸，它的pKaφ尽可能接近所需配制的缓冲溶液的pH值，然后计算酸与碱的浓度比，根据此浓度比便可配制所需缓冲溶液。以上主要以弱酸及其盐组成的缓冲溶液为例说明它的作用原理、pH计算和配制方法。对于弱碱及其盐组成的缓冲溶液可采用相同的方法。缓冲溶液在物质分离和成分分析等方面应用普遍，如鉴定Mg2 离子时，可用下面的反应：白色磷酸铵镁沉淀溶于酸，故反应需在碱性溶液中进行，但碱性太强，可能生成白色Mg（OH）2沉淀，所以反应的pH值需控制在一定范围内，因此利用NH3·H2O和NH4Cl组成的缓冲溶液，保持溶液的pH值条件下，进行上述反应。
从试剂瓶取用试剂，用左手持量筒（或试管），并用大姆指指示所需体积刻度处。右手持试剂瓶（注意：试剂标签应向手心避免试剂沾污标签），慢慢将液体注入量筒到所指刻度。读取刻度时，视线应与液体凹面的低处保持水平。倒完后，应将试剂瓶口在容器壁上靠一下，再将瓶子竖直，以免试剂流至瓶的外壁。如果是平顶塞子，取出后应倒置桌上，如瓶塞顶不是扁平的，可用食指和中指（或中指和无名指）医学教育|网搜集整理将瓶塞夹住（或放在洁净的表面皿上），切不可将它横置桌上。取用试剂后应立即盖上原来的瓶塞，把试剂瓶放回原处，并使试剂标签朝外，应根据所需用量取用试剂，不必多取，如不慎取出了过多的试剂，只能弃去，不得倒回或放回原瓶。以免沾污试剂。在缓冲溶液中加入少量强酸或强碱，其溶液pH值变化不大。
测定血清中的某些酶，如CK，离体(采集血液)后很容易失活。失活的原因是酶活性中心的活性基因巯基(一SH)被氧化造成的。只有通过适当的还原作用才能重新开始。如CK—NAC检测试剂盒即含有CK活化剂，名为N一乙酰半胱氨酸。实验研究证明，NAC对血清中已失活的CK活化过程约需180 S。这就是CK测定为什么要延迟时间较长的理论依据。在AST，ALT采用IFCC推荐方法测定时需要磷酸吡哆醛预活化。需要强调：含有活化剂的生化试剂，其测定酶活性的结果要高些。固体试剂的取用:贴标签的一面必须朝向手心处【防止药液洒出腐蚀标签】。D-Hanks平衡盐溶液(1×,无酚红)
检测试剂盒的特异性与检测试剂盒的要害组分，抗体对有关。立克次体染色液(改良Macchiavello法)
试剂盒在生产过程中的办法：质量确保是一个杂乱的过程，许多重要的环节都会影响检测质量。在生产过程中，不同批次的试剂的质量是确保完全一致非常困难，检测试剂盒甚至经过批检验项目和成果也不同，因此有必要挑选和订货试剂长批次，并小鼠检测试剂盒确保保存条件。严格执行本规范能够防止因试剂批号变化与质量控制系统和杂乱的过程，从头评价试剂从头建立，并能确保成果的稳定性；有效期短，运用率低的试剂，应小包装，包装，可每次都是采纳，以防止重复冻融损坏试剂引起的。立克次体染色液(改良Macchiavello法)
