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定量实时聚合酶链反应（qPCR）广用于特异性核酸的第三方检测，RNA转录物丰度的测量和高通量实验结果的验证。qPCR通常在标准的96孔板上进行，现在实验室里的qPCR就像移液器和烧杯那样常见。在引物设计和功能分析方面，NCBI里的数据已经很多了。但这些数据只是理论上的，在具体实验操作中还要经过各种复杂的计算和实验。在以前的qPCR中，为了使测定正常进行，通常需要进行大量耗时的反复试验。而现在，这些步骤都可以通过数据预实验来完成。更方便的是，已经有人把qPCR实验中所用到的各种工具都整合到了一个工具箱里。比如，Biosearch这个网站里，就有一个成套的qPCR工具箱OligoToolbox，其中包含的工具能做很多实验计算工作。

③待分离胶完全聚合后，倾去其顶部的去离子水，用滤纸将水吸干。④配制4％浓缩胶5mL，加TEMED5μL、10％APS50μL，混匀立即灌胶，灌至顶部，并垂直插入Teflon齿梳，室温静置20min待胶聚合。⑤待胶完全聚合后拔出梳子，将凝胶置于电泳槽中，加入电泳缓冲液，用电泳缓冲液冲洗上时间就是金钱，效率就是生命唯有惜时才能成功，唯有努力方可成就样孔以去除气泡。2电泳①取各个处理组蛋白提取液，调整蛋白浓度为6μg/μL，和等体积2上样缓冲液混合，即为上样液。②将上样液于100℃沸水中煮沸5min，使蛋白变性，冰上骤冷，3000转/min离心1min。③每孔加上样液15μL，留一孔加10μL预染的Marker。加满电泳缓冲液，盖上槽盖，接通电源，先用80v恒压电泳，约20min，当指示剂溴酚蓝进入分离胶后改用110v恒压电泳，当指示剂到达距凝胶下端约处时关闭电源，取出胶板。3转印蛋白及免疫检测①在电泳即将结束前，预先将PVDF膜浸泡在甲醇中15s，然后用ddH2O漂洗2min，浸泡于转移缓冲液中5min后开始后续操作。②在水中撬胶，修胶后将胶浸泡于转移缓冲液中平衡15min。③按黑面（负极）→海绵→滤纸→胶→PVDF膜→滤纸→海绵→红面（正极）的顺序制备转膜“三明治”。瑞普信生物技术有限公司专业第三方检测QPCR。

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