单核细胞冻存液怎么配

细胞复苏1.从液氮容器中取出冻存管，直接浸入37℃温水中，并不时摇动令其尽快融化。2.从37℃水浴中取出冻存管，打开盖子，用吸管吸出细胞悬液，加到离心管并滴加10倍以上培养液，混匀；3.离心，1000rpm，5min；4.弃去上清液，加入含10%小牛血清培养液重悬细胞，计数，调整细胞密度，接种培养瓶，37℃培养箱静置培养；5.次日更换一次培养液，继续培养。注意事项1．从增殖期到形成致密的单层细胞以前的培养细胞都可以用于冻存，但比较好为对数生长期细胞。在冻存前***比较好换一次培养液；2．将冻存管放入液氮容器或从中取出时，要做好防护工作，以免***；3．冻存和复苏比较好用新配制的培养液。细胞冻存为什么要慢冻?单核细胞冻存液怎么配

细胞冻存1.配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的冻存培养液；2.取对数生长期的细胞，去除旧培养液，用PBS清洗。3.去除PBS，加入适量胰蛋白酶（覆盖培养皿表面）把单层生长的细胞消化下来；4.离心1000rpm，5min；5.去除胰蛋白酶，加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，计数，调节冻存液中细胞的**终密度为5106/ml～1107/ml；6.将细胞分装入冻存管中，每管1～1.5ml；7.在冻存管上标明细胞的名称，冻存时间及操作者；8.冻存：标准的冻存程序为降温速率-1～-2℃/min；当温度达-25℃以下时，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃时，则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中过夜，取出冻存管，移入液氮容器内。原代细胞冻存液一般加多少细胞冻存一定要没过液氮吗?

细胞冻存的操作步骤是什么配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的冻存培养液；取对数生长期的细胞，去除旧培养液，用PBS清洗。去除PBS，加入适量胰蛋白酶（覆盖培养皿表面）把单层生长的细胞消化下来；离心1000rpm，5min；去除胰蛋白酶，加入适量配制好的冻存培养液，用吸管轻轻吹打使细胞均匀，计数，调节冻存液中细胞的**终密度为5×106/ml～1×107/ml；将细胞分装入冻存管中，每管1～1.5ml；在冻存管上标明细胞的名称，冻存时间及操作者；冻存：标准的冻存程序为降温速率-1～-2℃/min；当温度达-25℃以下时，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃时，则可迅速浸入液氮中。也可将装有细胞的冻存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中过夜

4.逐滴加入5-7mL的预热的培养基到15mL的离心管中，加入的同时轻轻混匀。5.室温以300xg离心5分钟。6.吸出培养基，使细胞沉淀完好无损。使用2mL血清移液管轻轻将细胞沉淀重悬于1mL的培养基中。7.将0.5mL的细胞混合物转移到含有培养基的预包被的6孔板的培养孔中（例如，每个冻冻管可以铺板两个孔）。8.将培养板放入37°C培养箱。快速前后左右的摇晃培养板数次，将细胞聚集体分布均匀。24小时内不要移动培养板。注意：解冻复苏后如果只能观察到少数的未分化的集落细胞冻存液无动物来源血清成分，化学成分明确。

细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，实验证明这样可以比较大限度的保存细胞活力。如今细胞冻存多采用甘油或二甲基亚砜作保护剂，这两种物质能提高细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，减少细胞内冰晶的形成，从而减少由于冰晶形成造成的细胞损伤。复苏细胞应采用快速融化的方法，这样可以保证细胞外结晶在很短的时间内即融化，避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内形成胞内再结晶对细胞造成损伤。理论上储存时间是无限的。采取逐级降温保存：4℃放置20min，-20℃放置30min，-70℃ 过夜，***置于液氮罐中长期存储。单核细胞冻存液怎么配

细胞冻存液主要成分是什么?单核细胞冻存液怎么配

细胞冻存和复苏的原则是：慢冻速融，这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何保护剂，会导致细胞内冰晶的产生，从而使细胞产生内源性的机械损伤，引起细胞内环境渗透压，PH，电解质等的改变，进而促使细胞死亡。在过去的几十年中，科研工作者将培养基、血清和DMSO按照一定的比例配制成冻存液，并配合手工使细胞从4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步转移使其达到“慢冻”的效果。但这种自制的冻存液储存时间一般比较短，不能满足时间跨度大的实验项目的需求。且这样人力和时间成本大，人手操作的误差和血清制品的批间差也给实验结果带来了不稳定性。单核细胞冻存液怎么配

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