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免疫沉淀RIP实验中磁珠还是琼脂糖珠的选择取决于客户实验情况。琼脂糖珠海绵状的结构 (直径 50-150 ...

免疫沉淀基本参数

品牌
世途科生物
产品名称
免疫沉淀磁珠Protein A/G
有效期
12个月

免疫沉淀企业商机

免疫沉淀RIP实验中磁珠还是琼脂糖珠的选择取决于客户实验情况。

琼脂糖珠海绵状的结构 (直径 50-150 μm) 可以结合抗体 (继而结合靶蛋白) ，它能够直接高效、快速结合抗体，而不需借助特殊的专业设备。琼脂糖珠呈多孔结构，这使得它们拥有更大的表面积可与蛋白质相互接触，具有更高的结合载量。

与琼脂糖珠不同，磁珠是固体，抗体的结合限于磁珠的表面。磁珠 (直径 1-4 μm) 明显小于琼脂糖珠，尽管磁珠没有多孔中心增加结合能力，但每体积的磁珠数量比琼脂糖珠多，使磁珠拥有足够的抗体结合表面积满足高容量的抗体结合。

简而言之，琼脂糖珠的结合能力较强，而磁珠在得率，可重复性以及自动化方面有明显的优势。

免疫沉淀ChIP抗体的选择？anti DYKDDDDK免疫沉淀磁珠现货

免疫沉淀（immunoprecipitation）是指利用抗体可与抗原特异性结合的特性，将抗原（常为靶蛋白）从混合体系沉淀下来，初步分离靶蛋白的一种方法。免疫共沉淀（coimmunoprecipitation）是一种在体外探测两个蛋白分子间是否存在特异性相互作用的一种方法。其原理非常简单，如果两个蛋白在体外体系能够发生特异性相互作用的话，那么当用一种蛋白的抗体进行免疫沉淀时，另一个蛋白也会被同时沉淀下来。与酵母双杂交技术不同，免疫共沉淀技术所利用的是抗原和抗体间的免疫反应，是一种基于体外非细胞的环境中研究蛋白质与蛋白质的相互作用的方法。温州anti DYKDDDDK免疫沉淀磁珠哪个公司好用免疫沉淀技术的综述。

Co-IP（免疫共沉淀）技术主要用于研究蛋白质之间的相互作用，其实验设计如下：

1. 样品准备：Co-IP实验通常有两种，一种是内源性蛋白相互作用验证，一种是非内源性蛋白相互作用验证。内源性相互作用通过质粒共转染的方式将两种蛋白转染至同一细胞内表达；非内源性相互作用则是将含有靶蛋白的组织进行预处理及细胞裂解获得细胞裂解液。

2. 沉淀诱饵蛋白：利用磁珠偶联抗体沉淀诱饵蛋白。在样品中加入磁珠偶联抗体，抗体会与诱饵蛋白结合，利用磁铁将磁珠拉下，同时诱饵蛋白会一起被沉淀出来。

3. SDS-PAGE及WB检测：得到沉淀后，需要验证沉淀中是否存在相互作用蛋白。先利用SDS-PAGE将蛋白复合物分离，随后利用WB检测是否存在靶蛋白。

4. 实验对照设置：为了避免“假阳性”，需要设置正确的对照，包括阴性对照和阳性对照（Input组）。Input组为直接利用抗体对细胞裂解液进行WB检测，验证细胞裂解液中存在蛋白。

5. 结果真实性：确保共沉淀的蛋白是由所加入的抗体沉淀得到的，而并非外源非特异蛋白。使用单克隆抗体有助于避免污染的发生。

免疫沉淀技术（Immunoprecipitation, IP）是一种用于研究蛋白质相互作用和蛋白质特性的重要方法。它具有一些明显的优点，但也存在一些局限性。

优点:

1. 特异性强：IP技术利用特异性抗体对目标蛋白进行捕获，因此具有很高的特异性。

2. 富集低丰度蛋白：可以从小量样本中富集低丰度的目标蛋白，有助于研究稀有蛋白。

3. 研究蛋白质相互作用：通过Co-IP等变体技术，可以研究蛋白质之间的相互作用。

4. 操作简便：IP实验步骤相对简单，容易在实验室中实施。

缺点:

1. 对抗体质量依赖性高：需要高质量的特异性抗体，否则可能导致假阳性或实验失败。

2. 存在非特异性结合：样本中的其他蛋白质可能非特异性地结合到抗体或固相载体上。

3. 可能破坏蛋白质的天然构象：裂解和洗涤步骤可能破坏蛋白质的天然结构，影响其功能。

4. 可能存在背景噪声：非特异性结合可能导致背景噪声，影响结果的清晰度和解释。

免疫沉淀Co-IP抗体的选择？

免疫共沉淀分析（Co-IP）实验原理与IP十分类似，基本的技术都是采用目标抗原特异性的固相化抗体；但IP的目标是纯化单一抗原，而Co-IP旨在分离抗原及与抗原结合的蛋白质或配体。

在Co-IP实验中，已知抗原称为诱饵蛋白，与之结合的蛋白则称为靶蛋白。靶蛋白可能是一些复杂的伴侣蛋白、信号分子、结构蛋白、辅助因子等，蛋白间相互作用强度范围可能介于高度瞬时和十分稳定之间。基本的Co-IP实验方案与IP相同，实际上任何IP系统均可用于Co-IP。但是，还有许多其他因素需要考虑，例如，结合和洗涤条件的优化，优化时，需要考虑到诱饵蛋白-靶蛋白的相互作用强度以及抗体-诱饵蛋白的亲和力。

免疫沉淀技术的实验设计。深圳Co IP免疫沉淀磁珠原理

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ChIP（染色质免疫沉淀）实验是一种用于研究蛋白质与DNA相互作用的技术。以下是ChIP实验的实验方法概述：

1. 交联：将细胞与交联剂（如1%甲醛）孵育，通常在室温下进行10-15分钟。

2. 终止交联：添加甘氨酸以终止交联反应，孵育5分钟。

3. 收集细胞：通过离心收集细胞，并用PBS洗涤以去除交联剂。

4. 细胞裂解：使用裂解缓冲液裂解细胞，释放染色质。

5. 染色质剪切：使用超声波或酶消化将染色质剪切成适当大小的片段。

6. 免疫沉淀：将剪切后的染色质与特异性抗体孵育，然后添加蛋白A/G磁珠。

7. 洗涤：用低盐、高盐和LiCl洗涤液洗涤磁珠，去除非特异性结合物。

8. 洗脱：用洗脱缓冲液洗脱DNA。

9. 逆转交联：用蛋白酶K处理，然后在65°C下加热过夜以逆转交联。

10. DNA纯化：使用商业试剂盒或标准酚/氯仿方法纯化DNA。

11. 分析：使用qPCR分析富集的DNA，或进行测序以确定蛋白质结合位点。

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此外，免疫沉淀还可用于研究蛋白质的翻译后修饰（如磷酸化、泛素化等），通过使用特异性修饰抗体，可以富集和检测特定修饰形式的蛋白。在功能研究中，免疫沉淀可以帮助确定蛋白的亚细胞定位、表达水平以及与其他分子的相互作用。尽管免疫沉淀技术具有高特异性和广泛的应用前景，但其也存在一些局限性。例如，抗体的交叉反应性可能导致假阳性结果，而低丰度蛋白的检测可能受到样品复杂性和实验灵敏度的限制。此外，免疫沉淀实验通常需要较长的操作时间和较高的实验成本。近年来，随着技术的不断发展，免疫沉淀的衍生技术（如染色质免疫沉淀ChIP、RNA免疫沉淀RIP）也在表观遗传学和RNA研究领域得到了广泛应用。这些技术进一步拓展了免...